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栽培大豆起源于一年生野生大豆,与其他豆科作物一样,种子硬实是大豆驯化相关的一个重要性状。本研究利用栽培大豆中黄39与野生大豆NY27-38杂交,构建F2、RIL分离群体,发掘与野生大豆种子硬实相关的QTL。具体研究结果如下:1.栽培大豆中黄39的种子处理2 h时有74.0%的种子吸水皱缩,4 h时种子100.0%充分吸胀,而野生大豆NY27-38种子12 h处理后94.0%表现硬实,因此确定4 h为群体表型鉴定处理时间。2.中黄39×NY27-38的F1单株种子蒸馏水处理4 h后92.0%表现不吸胀,说明硬实对吸胀为显性。F2群体中硬实单株（吸胀率≤20%）53个,中间类型单株（吸胀率介于20%-80%）155个,吸胀单株（吸胀率≥80%）93个,卡方检验不符合3:1的分离比,说明该群体中硬实性并非由单基因控制。F7群体（203个家系）,硬实的为105个（占51.7%）,中间类型为45个（占22.2%）,吸胀的为53个（占26.1%）。另外,种子吸胀性与种皮色有一定的相关性,与种子百粒重、粒长、粒宽均不显著相关。3.选择F2分离群体中吸胀和硬实单株,DNA等量混合分别构建吸胀与硬实DNA池,以分布于大豆20条染色体的259个亲本间有多态性的SSR标记筛选DNA池。在2号和6号染色体共检测到18个SSR标记在DNA池间具有多态性,2号染色体16.3 Mb区间内检测到10个SSR标记在吸胀和硬实DNA池间存在差异,6号染色体23.4 Mb区间内检测到8个SSR标记在吸胀和硬实DNA池间存在差异。利用多态性SSR标记对F2群体进行检测并构建遗传图谱,采用完备区间作图法检测到2个主效QTL,2号染色体QTL可以解释17.2%的表型变异,位于标记Satt274与Sat198间276.0 kb的遗传区域,包含已克隆的大豆硬实基因GmHs1-1和qHS1。6号染色体QTL位于标记BARCSOYSSR061090与BARCSOYSSR061339间,可以解释5.3%的表型变异。4.利用F7群体中极端表型单株建池时,分布于3条染色体的24个SSR标记在两个DNA池间具有多态性。在2号染色体19.3 Mb区间、6号染色体27.8 Mb区间和3号染色体18.2 Mb区间分别检测到11个、9个和4个SSR标记在吸胀和硬实DNA池间存在差异。利用192个SSR标记检测F7群体（203个家系）,定位到3个大豆种子硬实QTL,分别位于2号、3号和6号染色体。2号染色体上QTL位于标记Satt274与标记Sat198之间,可以解释23.3%的表型变异;3号染色体上的QTL位于标记Sat266与标记Sat236之间（1.5 Mb）,可以解释4.9%的表型变异;6号染色体上的QTL位于标记Sat402与标记Satt557之间（3.8 Mb）,可以解释20.4%的表型变异,说明利用BSA法进行硬实相关QTL的挖掘是高效可行的方法。