口服鸭瘟弱毒苗诱导鸭抗体介导的黏膜和系统免疫发生规律研究

来源 :中国畜牧兽医学会动物微生态学分会第三届第八次全国学术研讨会暨动物微生态企业发展战略论坛 | 被引量 : 0次 | 上传用户:ayun2009
下载到本地 , 更方便阅读
声明 : 本文档内容版权归属内容提供方 , 如果您对本文有版权争议 , 可与客服联系进行内容授权或下架
论文部分内容阅读
为探讨鸭瘟弱毒苗诱导鸭抗体介导的黏膜和系统免疫发生的规律,本文将鸭瘟病毒Cha株弱毒苗口服免疫20日龄天府肉鸭后60天内定时随机剖杀2只鸭,采集血清、胆汁、气管和消化道(食道、十二指肠、空肠、回肠、盲肠和直肠)分泌液,应用间接ELISA检测抗DPV的IgA、IgM和IgG含量(以Log10OD值表示).结果表明:①血清:检测到IgA、IgM和IgG的时间段分别为9~36、3~15和9~60 d,由高到低为IgG(3.73±0.04)、IgM(3.09±0.01)和IgA(2.1±0.02)②胆汁:检测到IgA、IgM和IgG的时间段分别为6~15、9~12和12~36 d,由高到低为IgA(3.53±0.03)、IgG(2.14±0.05)和IgM(1.4±0.01).③气管:检测到IgA、IgM和IgG的时间段分别为6~60、3~12和9~27 d,由高到低为IgA(3.12±0.03)、IgM(1.82±0.01)和IgG(1.45±0.02).④食道:检测到IgA、IgM和IgG的时间段分别为3~60、3~27和9~60 d,由高到低为IgA(3.19±0.03)、IgM(2.36±0.05)和IgG(1.96±0.05).⑤肠道:IgA由高到低为十二指肠(3.49±0.05)、空肠(2.81±0.01)、盲肠(2.39±0.02)、回肠(2.28±0.02)和直肠(2.09±0.03),相应的检测到IgA的时间段分别为3~60、6~60、6~60、9~60和3~60d;IgM由高到低为十二指肠(2.15±0.01)、空肠(1.7±0.01)、直肠(1.58±0.04)、回肠(1.57±0.03)和盲肠(1.48±0.03),相应的检测到IgM的时间段分别为3~15、6~12、6 d、6~9和6 d;IgG由高到低为十二指肠(1.7±0.01)、空肠(1.63±0.01)、盲肠(1.57±0.03)、直肠(1.56±0.05)和回肠(1.4±0.01),相应的检测到IgG的时间段分别为9~27、9~36、12~36、12~21和15~21 d.综上,鸭瘟弱毒疫苗口服免疫鸭后,IgM是血液中最早发挥作用的免疫球蛋白,而IgG发挥作用时间最长;IgA、IgG和IgM在胆汁中存留时间短;IgA是呼吸道和消化道存留时间最长、含量最高的主要免疫球蛋白,其含量在肠道中由前向后逐渐降低.IgA是抗DPV强毒自然感染的主要免疫球蛋白.DPV弱毒疫苗口服免疫鸭所激发的抗体介导的黏膜免疫与系统免疫是第一道与第二道免疫防御屏障的关系,在第一道屏障中,黏膜免疫发挥主要作用,系统免疫发挥次要作用;而在第二道屏障中,系统免疫发挥主要作用,黏膜免疫发挥次要作用,两者之间相互渗透、互为交叉、密切协同,共同组成抗DPV感染的免疫防御体系.
其他文献
根据已发表的细小病毒(Porcine parvovirus,PPV)NADL-2株全基因序列,设计一对引物用PCR方法扩增出PPV VP2基因,将其连接到pGEM-T载体中,此重组质粒命名为pVP2.对含伪狂犬病病毒(Pseudorabies virus,PRV)Min-A株gD、gI、gE、11K全基因,gG、28K基因部分编码区的质粒pPR128进行改造,用StuI和SphI双酶切,切去部分g
根据Genbank上发表的牛肌生成抑制素(MSTN)基因编码序列设计引物,以牛肌细胞总RNA为模板,采用RT-PCR方法克隆到编码肌肉生成抑制素成熟蛋白基因,并经DNA序列测定,产物全长1128bp,编码375氨基酸序列,并经序列分析,与牛MSTN基因序列的同源性高达99%;与猪MSTN基因序列的同源性为94.1%;与鸡MSTN基因序列的同源性为81.7%.
根据GenBank中鸭疫里默氏杆菌(RA)16SrRNA基因序列设计特异性引物,建立了基于16SrRNA鸭疫里默氏杆菌PCR检测方法.建立的PCR方法对鸭疫里默氏杆菌、大肠杆菌、沙门氏菌、鸭源金黄色葡萄球菌、两双歧杆菌、短乳酸杆菌、屎肠球菌和短小芽胞杆菌进行检测,结果只有鸭疫里默氏杆菌DNA能扩增出844bp的特异条带,其他细菌的DNA不能扩增出任何条带;从凝胶条带中回收DNA条带,测序结果与Ge
根据本实验室建立的检测双歧杆菌、芽孢杆菌及肠球菌的实时荧光定量PCR(FQ-PCR)方法,对20日龄樱桃谷鸭经皮下注射途径感染鸭瘟病毒CH强毒株后的消化道内双歧杆菌、芽孢杆菌及肠球菌的数量变化规律进行了研究.结果表明,正常对照组鸭的消化道中肠球菌数量最多,双歧杆菌次之,芽孢杆菌含量最少;消化道双歧杆菌、芽孢杆菌及肠球菌数量在检测期间均比较稳定,无大的波状变化,维持肠道微生态的动态平衡.感染鸭消化道
根据本实验室建立的检测双歧杆菌、芽孢杆菌及肠球菌的实时荧光定量PCR(FQ-PCR)方法,对20日龄樱桃谷鸭经皮下注射途径感染鸭瘟病毒CH强毒株后的呼吸道内双歧杆菌、芽孢杆菌及肠球菌的数量变化规律进行了研究.结果表明,正常对照组鸭的呼吸道中肠球菌数量最多,双歧杆菌与芽孢杆菌含量基本一致;呼吸道双歧杆菌、芽孢杆菌及肠球菌数量在检测期间均比较稳定,无大的波状变化,维持正常菌群的动态平衡.感染鸭呼吸道双
根据本实验室建立的检测双歧杆菌、芽孢杆菌及肠球菌的实时荧光定量PCR(FQ-PCR)方法,对20日龄樱桃谷鸭经口服途径感染鸭瘟病毒CH强毒株后的消化道内双歧杆菌、芽孢杆菌及肠球菌的数量变化规律进行了研究.结果表明,正常对照组鸭的消化道中肠球菌数量最多,双歧杆菌次之,芽孢杆菌含量最少;消化道双歧杆菌、芽孢杆菌及肠球菌数量在检测期间均比较稳定,无大的波状变化,维持肠道微生态的动态平衡.感染鸭消化道双歧
利用PCR从重组质粒PBV220-IFN-α中扩增鸭α干扰素(IFN-α)成熟蛋白基因,克隆到PMD18-T载体,最后将其连接到原核表达载体pET32a+,转化宿主菌BL21(DE3),经IPTG诱导后获得高效表达.表达的基因工程蛋白分子量大小约37KD,占菌体总蛋白的35%,以包涵体形式存在.利用镍金属螯合介质填料对表达产物进行纯化,经过复性后加入长成单层的鸭胚成纤维细胞(DEF)作用18h,接
提取1型鸭疫里氏杆菌的基因组DNA,以Kpn Ⅰ进行酶切,纯化0.5kb至5kb之间的DNA片段,与经同样酶切并去磷酸化的质粒载体pQE30连接,转化BL21感受态细胞,从而构建了1型鸭疫里氏杆菌基因组的质粒表达文库,库容量为12000个,随机挑选的阳性克隆提取质粒酶切后证明有外源DNA片段插入.该文库为应用体内诱导抗原技术筛选鸭疫里氏杆菌的体内诱导基因奠定了基础.
将猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)ORF5基因疫苗分别以200μg、100μg、100μg+100μg猪白介素2真核表达质粒(pcDNA-IL-2)和50μg肌肉注射以及10μg基因枪轰击的方法免疫28日仔猪,并设空载体和生理盐水对照:①取200μg肌肉注射组仔猪15d和30d的血液、胃、肠、肝、脾、肾、心肌、肺脏、注射部位肌肉、脑、腹股沟淋巴结、髂下淋巴结和胰腺等组织器官;②取各组1d、15
以1株鸡鲍氏志贺菌、1株痢疾志贺菌和1株鸡白痢沙门氏菌为研究对象,分别提取基因组DNA,利用随机扩增多态性DNA(RAPD)技术对其基因组DNA进行了分析.结果,从6条随机引物中筛选出了4条能在这3种菌中有较好多态性的随机引物,4个有效引物共扩增出了62个DNA片段,其中3个菌株共有的谱带有7条,显示多态性的片段有55个,占88.7%;在4条引物中进一步筛选出1条引物p6的扩增图谱可用于种的鉴别,