目的：　　探讨间充质干细胞（MSC）向食道平滑肌细胞、上皮细胞诱导分化的有效方法和机制，为食道组织工程提供种子细胞；探索电纺丝纤维、脱细胞食道粘膜与生物可降解聚氨酯（PU）复合支架的构建以及动物体内重建修复食道缺损的可行性方法。　　方法：　　以密度梯度法提取和培养MSC，流式细胞术检测CD29、CD34、CD45、CD44、CD90的表达情况。分别采用与成熟平滑肌细胞共培养，EGF等诱导剂直接诱导的方法，诱导MSC向平滑肌细胞和上皮细胞分化，通过形态观察、免疫荧光染色等方法检测上述诱导方法的有效性。另一方面，以静电纺丝法制备PCL/SF（聚己内酯/丝素）多孔纳米纤维（模拟食道基膜niche），表面活性剂联合DNA酶法制备脱细胞食道粘膜基质，以生物可降解PU为基材制备具有微槽图案的支架（支持肌组织生长），以正常食道的组织学构造为导向，复合上述多层支架构造，制备了可同时支持食道组织中粘膜、粘膜下层和肌层细胞和组织再生的复合支架。以MSC为种子细胞，新西兰大白兔为实验动物，首先行背部皮下埋植以检测支架的组织相容性及支架在体内的作用，包括炎症、周围组织供血、支架降解等；其次，建立小型动物缺损模型，以片状支架植入颈段食道，以检测支架与体内食道的作用以及修复小范围食道缺损的可行性；最后，在上述实验成功的基础上，构建管状食道支架，建立原位替代整环食道使其再生的技术，包括粘膜和肌层的再生。　　结果：　　培养的MSC细胞梭形，呈旋涡状排列，强表达间充质干细胞的特征蛋白CD29、CD44、CD90；不表达CD34、CD45。诱导分化的MSC分别表达平滑肌细胞、上皮细胞的特异蛋　　白α-actin和CK14。动物皮下实验结果显示支架具有良好的生物学性能；原位替代实验中，所有兔子未出现吻合口瘘，染色结果显示手术部位实现上皮化，并可见平滑肌再生。　　结论：　　MSC采用上述方法可以完成平滑肌细胞、上皮细胞的诱导分化。由电纺丝纤维、脱细胞食道粘膜与有槽化聚氨酯（PU）复合构建的支架，能支持MSC的生长，植入动物体内未出现免疫排斥，可原位支持食道粘膜和肌层的再生，这些技术有望实现对病变食道缺损的修复。