应用超声靶向微泡破坏(UTMD)介导连接有核定位信号(NLS)的质粒DNA转染293T细胞，增加基因入胞及入核量，从而提高细胞对外源基因的转染效率。

合成连接有细胞特异性抗体的靶向微泡，特异性识别293T细胞膜表面SV40T抗原，强化UTMD空化作用使细胞膜通透性增加，从而提高质粒入胞率；通过肽核酸(PNA)将NLS与增强型绿色荧光蛋白质粒(EGFP-N3)基因交联，构建一种基因传递系统介导细胞核对外源基因的摄取。转染后比较以下几组间转染效率：空白对照组(A组)、普通微泡＋质粒组(B组)、靶向微泡＋质粒组(C组)、普通微泡＋NLS-PNA-DNA组(D组)，靶向微泡＋NLS-PNA-DNA组(E组)。倒置荧光显微镜观察荧光分布情况；CCK-8检测细胞活性；流式细胞仪检测细胞转染率；RT-PCR以及Western blot检测目的基因mRNA和蛋白的表达水平。

UTMD联合靶向微泡可显著提高胞质对外源性DNA的摄入，且细胞存活率均>80%；倒置荧光显微镜示细胞内绿色荧光表达量依次递增；流式细胞仪检测五组基因转染效率分别为0、(9.30±0.46)%、(26.46±2.01)%、(29.54±0.62)%、(45.72±1.86)%，差异均有统计学意义(P均<0.05)；E组EGFP的mRNA和蛋白的相对表达量均显著高于C、D组，差异均有统计学意义(P均<0.05)。

UTMD介导靶向微泡和连接有核定位信号的质粒DNA可明显增加细胞对质粒DNA的摄取表达，显著提高外源基因的转染效率。