加工番茄为呼吸跃变型果实，伴随呼吸跃变产生大量乙烯，即系统Ⅱ乙烯，易使番茄果实过熟，腐烂变质。 SlACS2是番茄系统Ⅱ乙烯合成的限速酶，旨在通过CRISPR-Cas9基因组编辑系统修饰该基因，调控系统Ⅱ乙烯过量表达，以迟滞番茄过熟腐烂。利用CRISPR/Cas9系统定点编辑加工番茄 SlACS2基因，在 SlACS2的第2外显子区域设计2个靶位点，构建双靶点的CRISPR/Cas9敲除载体，通过农杆菌介导法转化加工番茄，再生培养获得T0代转基因幼苗，通过PCR扩增卡那霉素抗性基因获得阳性株系。为进一步获得纯合突变，对T1代植株的双靶位点区域进行PCR扩增和测序分析，鉴定 SlACS2突变类型。结果发现，从阳性植株的T1后代中鉴定出6种在两个靶位点发生纯合突变类型植株，其中靶位点1突变类型较为丰富，分别发生单碱基的插入及1个、4个、5个和9个碱基的缺失；靶位点2则只有7个碱基的缺失一种编辑类型。结果表明，已成功在加工番茄体内实现对内源 SlACS2的定点敲除，获得的基因编辑植株，为进一步筛选耐贮突变体提供材料基础。