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海洋生物由于其生活环境的不同：温度、盐度、光照条件、氧气含量、深度、地理纬度等,细菌在水平方向和垂直方向存在一定的差异。这种海洋细菌的多样性导致海洋生物种类、微生物代谢种类、生存环境等多样化。多样化的环境在其生态环境中起着非常重要的作用。近年来,海洋细菌在海洋生态系统中海洋生态环境的修复、物质循环和能量传递的过程中占有重要的地位。此外,海洋微生物除了为人类提供丰富的可直接利用的食物外,还提供医药、化妆品等各种代谢产物。加强对微生物多样性的研究与利用,对提高对海洋环境的认识具有重要意义。海洋细菌多样性致使其产生丰富的海洋毒素,这些毒素作用机理的复杂性、代谢的多样性等对海洋环境及其其它生物的生存产生了很大的影响。因此,进行海洋微生物毒素的深入研究是十分有必要的。本文进行了深海沉积物样品细菌多样性分析,通过16S rRNA基因序列分析表明,此深海沉积物样品中分离得到了Pseudoalteromonas、Bacillus、Microbacterium、 Pseudochrobactrum、Shigella、Halomonas、Staphylococcus、Pseudochrobactrum、 Marinobacter、Thalassospira、Maricaulis、Brachybacterium、Lysinibacillus和Alcaligenes等共14个属。通过分析表明在此海洋环境中Bacillu、Thalassospira分别占此生境可培养细菌的38.16%和15.79%,而Halomonas、Alcaligene和Pseudoalteromonas的分布比较少,均为1.32%。这表明不同的细菌对生境的适应能力有很大的差别。对多数海洋细菌的16S rRNA基因序列进行分析后发现与其同源性菌的基因序列相比多数大100%,部分序列的同源性仅为96.73%,可能为细菌新种。α-溶血素(HlyA)是由细菌分泌的能够使细胞溶解的毒素,多为磷脂酶,可在羊血血平板上能产生光亮的透明圈。本实验以未见毒素研究相关报道的Thalassospira xiamenensis TH3的Hly A毒力效应子为切入点,研究其致病性。通过基因克隆,对其进行克隆表达,获得经Ni2+纯化的HlyA蛋白。结果显示：经酶切验证无误,成功构建pET28a(+)-hlyA重组质粒,将该重组质粒转入E.coli BL21中诱导表达并纯化,SDS-PAGE分析纯化的蛋白,结果为单一的约31kDa条带,经考马斯亮蓝法测定,浓度为0.215mg/mL,可用于进一步的致病机制研究。此外,本实验采用Thalassospira xiamenensis TH3为研究对象,对其细菌胞外和纯化后蛋白,采用血平板法测试法,进行毒性检测体内外溶血性的差异,结果表明：不论是胞外分泌物还是纯化后的蛋白均有溶血现象,但效果均不显著。