肌纤生成调节因子MR1（myofibrillogenesis regulator 1）为中国协和医科大学医药生物技术研究所代谢工程室克隆发现的新基因。它的完整cDNA由416个核苷酸组成，编码142个氨基酸，它的EST序列最初是从人卵巢肿瘤组织中克隆得到的，后来发现它也存在于子宫内膜组织及甲状旁腺肿瘤组织。初步研究表明该蛋白是一种膜蛋白，这种膜蛋白与肌肉收缩调控以及细胞信息传导和凋亡过程相关。我的论文工作是在此基础之上进行的，主要分为以下三部分。本论文第一部分是应用PCR-SSCP技术对MR1基因进行研究，筛查MR1的基因突变。针对MR1基因的三个外显子分别设计了三对引物，得到MR1三个外显子的PCR产物进行PCR-SSCP分析，只有外显子3存在基因突变，虽然该突变并未造成蛋白氨基酸组成的变化，但这种突变是否影响其基因拼接并导致功能的变化尚待进一步研究。本研究第二部分是应用酵母双杂交技术研究与MR-1蛋白相互作用的蛋白，克隆它们的编码基因；并将MR1基因分段蛋白与得到的阳性AD蛋白相互作用，研究MR1蛋白的功能。本研究采用美国科隆技术公司酵母双杂交系统3中的酵母菌株AH109和pGBKT7诱饵载体（BD）。首先构建MR1的诱饵质粒，用这个诱饵质粒筛选人骨骼肌cDNA文库并通过β-gal分析验证，最终获得了9个阳性AD质粒，序列分析比较结果表明阳性AD质粒中的cDNA片段分别编码八个蛋白。然后根据MR1的跨膜区域结构，<WP=90>将MR1从跨膜位点处分成两段，构建诱饵质粒，再分别与这些筛选出来的阳性AD蛋白进行酵母双杂交，结果显示这些AD蛋白与MR1的相互作用区域不一样，可能提示MR1在参与肌肉收缩调控的过程中，与不同蛋白之间的作用机制不同。本研究为深入研究MR-1蛋白在细胞生物学尤其是参与肌肉收缩调控中的作用打下了基础。本研究第三部分是通过建立携带hMR1转基因小鼠模型，来进一步研究MR1基因的功能。首先利用受精卵原核的显微注射技术，将MR1基因显微注射至CD-1?∕(ICR)BR小鼠受精卵中，并移植到假孕受体鼠的输卵管内，然后应用PCR、Western Blot杂交技术分析子代鼠中基因的整合及表达情况。最终得到6只首建转基因小鼠，稳定遗传三代，得到三个稳定的家系，通过Western Blot分析，发现hMR1在转基因小鼠和正常小鼠中的表达有着明显的区别。结果证明采用受精卵显微注射的方法成功地建立MR1转基因小鼠，并证实所使用的基因片段能够在小鼠体内表达并随小鼠的传代而遗传，但由于位置效应或是其它原因，转基因小鼠的目的蛋白表达差异很大，但都和正常小鼠不同。对于hMR1对转基因小鼠的功能影响还需要进一步的研究。