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目的：
1.分离培养棕色脂肪干细胞(Brown Adipose-derived mesenchymal stem cells BADSCs)和白色脂肪干细胞(White Adipose-derived mesenchymal stem cells WADSCs)，并对两种细胞进行鉴定及生长动力研究。
2.比较BADSCs和WADSCs体外成脂、成骨及成软骨能力，为组织工程种子细胞的选择提供理论依据。
3.分别研究不同miRNA在ADSCs成软骨分化中的作用，以及不同miRNA在ADSCs成软骨分化中的协同作用，并试图探究其作用机制。
方法：
1.分离SD大鼠棕色及白色脂肪组织，得到BADSCs和WADSCs。倒置显微镜观察两种细胞的形态、细胞计数检测增殖能力、流式仪鉴定细胞表面抗原标记物。
2.将BADSCs和WADSCs进行成脂、成骨和成软骨诱导。两种细胞成脂后进行油红-O染色，成骨后进行碱性磷酸酶(Alkaline phosphatase ALP)活性检测及茜素红染色，成软骨后进行阿辛蓝染色。qRT-PCR进一步检测两种细胞成脂、成骨、成软骨相关基因的表达水平。
3.通过qRT-PCR检测ADSCs软骨向分化过程中，miR-99a和miR-127-5p时间相关的表达趋势。随后将miR-99a-inhibitor和miR-127-5p-mimic通过lipofectamine2000递送至ADSCs，递送miR-99a-inhibitor的ADSCs指定为M组，递送miR-127-5p-mimic的ADSCs指定为N组，递送miR-99a-inhibitor和miR-127-5p-mimic的ADSCs指定为M+N组，没有进行处理的ADSCs充当阴性对照(NC组)。24小时后通过qRT-PCR检测ADSCs内miR-99a和miR-127-5p的含量，并通过MTT法检测四组细胞的增殖能力。
4.四组ADSCs进行成软骨诱导，qRT-PCR检测软骨标志基因Ⅱ型胶原蛋白(TypeⅡcollagen-A1COL2A1)和聚集蛋白多糖(Aggrecan ACAN)mRNA的表达水平，WesternBlot检测COL2A1和ACAN蛋白质的表达水平。
结果：
1.分离培养BADSCs和WADSCs，细胞贴壁后，倒置显微镜观察，二者形态类似，WADSCs胞体较BADSCs大；流式仪鉴定二者表面抗原标记物，均符合间充质干细胞的特征；细胞计数检测增殖能力表明WADSCs强于BADSCs。
2.BADSCs和WADSCs都具有成脂分化能力。与BADSCs相比，WADSCs中脂滴形成相对较快且数量较多，相同时间点成脂标志基因PPAR、C/EBPB表达也相对较高；BADSCs和WADSCs均可成骨向分化。成骨诱导后相同时间点BADSCs的ALP活性较大，且5周时茜素红染色面积大于WADSCs。Runx2、OCN基因的表达也相对较高；BADSCs和WADSCs都具有成软骨分化能力。两种细胞切片的阿辛蓝染色和COL2A1、ACAN基因的表达量并无明显区别。
3.MiR-99a-inhibitor和miR-127-5p-mimic通过lipofectamine2000递送至ADSCs，24小时后qRT-PCR检测到miR-99a的量低于NC组和miR-127-5p的量高于NC组；通过MTT实验测得四组ADSCs的增殖能力无明显差异。
4.四组细胞用成软骨培养基进行诱导后，检测到M组和N组COL2A1、ACAN基因和蛋白水平的表达量高于NC组，M+N组COL2A1、ACAN基因和蛋白水平的表达量高于M组和N组。
结论：
1.本实验方法可较为快速的提取BADSCs和WADSCs并进行纯化。提取的BADSC和WADSCs都具有较强的增殖能力，可扩增为大量细胞，用于实验研究。
2.BADSCs和WADSCs均具有成脂分化能力，但WADSCs成脂分化能力较强；BADSCs和WADSCs均具有成骨分化能力，但BADSCs成骨分化能力较强；BADSCs和WADSCs均具有成软骨分化能力，且二者成软骨分化能力无明显差异。
3.MiR-99a和miR-127-5p在ADSCs的软骨分化中均可起到一定的调节作用，miR-99a在ADSCs的软骨分化中可起到抑制即负调节作用，miR-127-5p在ADSCs的软骨分化中可起到促进即正调节作用。MiR-99a-inhibitor可削弱miR-99a的负调节作用与正调节因子miR-127-5p协同促进ADSCs的软骨分化。
1.分离培养棕色脂肪干细胞(Brown Adipose-derived mesenchymal stem cells BADSCs)和白色脂肪干细胞(White Adipose-derived mesenchymal stem cells WADSCs)，并对两种细胞进行鉴定及生长动力研究。
2.比较BADSCs和WADSCs体外成脂、成骨及成软骨能力，为组织工程种子细胞的选择提供理论依据。
3.分别研究不同miRNA在ADSCs成软骨分化中的作用，以及不同miRNA在ADSCs成软骨分化中的协同作用，并试图探究其作用机制。
方法：
1.分离SD大鼠棕色及白色脂肪组织，得到BADSCs和WADSCs。倒置显微镜观察两种细胞的形态、细胞计数检测增殖能力、流式仪鉴定细胞表面抗原标记物。
2.将BADSCs和WADSCs进行成脂、成骨和成软骨诱导。两种细胞成脂后进行油红-O染色，成骨后进行碱性磷酸酶(Alkaline phosphatase ALP)活性检测及茜素红染色，成软骨后进行阿辛蓝染色。qRT-PCR进一步检测两种细胞成脂、成骨、成软骨相关基因的表达水平。
3.通过qRT-PCR检测ADSCs软骨向分化过程中，miR-99a和miR-127-5p时间相关的表达趋势。随后将miR-99a-inhibitor和miR-127-5p-mimic通过lipofectamine2000递送至ADSCs，递送miR-99a-inhibitor的ADSCs指定为M组，递送miR-127-5p-mimic的ADSCs指定为N组，递送miR-99a-inhibitor和miR-127-5p-mimic的ADSCs指定为M+N组，没有进行处理的ADSCs充当阴性对照(NC组)。24小时后通过qRT-PCR检测ADSCs内miR-99a和miR-127-5p的含量，并通过MTT法检测四组细胞的增殖能力。
4.四组ADSCs进行成软骨诱导，qRT-PCR检测软骨标志基因Ⅱ型胶原蛋白(TypeⅡcollagen-A1COL2A1)和聚集蛋白多糖(Aggrecan ACAN)mRNA的表达水平，WesternBlot检测COL2A1和ACAN蛋白质的表达水平。
结果：
1.分离培养BADSCs和WADSCs，细胞贴壁后，倒置显微镜观察，二者形态类似，WADSCs胞体较BADSCs大；流式仪鉴定二者表面抗原标记物，均符合间充质干细胞的特征；细胞计数检测增殖能力表明WADSCs强于BADSCs。
2.BADSCs和WADSCs都具有成脂分化能力。与BADSCs相比，WADSCs中脂滴形成相对较快且数量较多，相同时间点成脂标志基因PPAR、C/EBPB表达也相对较高；BADSCs和WADSCs均可成骨向分化。成骨诱导后相同时间点BADSCs的ALP活性较大，且5周时茜素红染色面积大于WADSCs。Runx2、OCN基因的表达也相对较高；BADSCs和WADSCs都具有成软骨分化能力。两种细胞切片的阿辛蓝染色和COL2A1、ACAN基因的表达量并无明显区别。
3.MiR-99a-inhibitor和miR-127-5p-mimic通过lipofectamine2000递送至ADSCs，24小时后qRT-PCR检测到miR-99a的量低于NC组和miR-127-5p的量高于NC组；通过MTT实验测得四组ADSCs的增殖能力无明显差异。
4.四组细胞用成软骨培养基进行诱导后，检测到M组和N组COL2A1、ACAN基因和蛋白水平的表达量高于NC组，M+N组COL2A1、ACAN基因和蛋白水平的表达量高于M组和N组。
结论：
1.本实验方法可较为快速的提取BADSCs和WADSCs并进行纯化。提取的BADSC和WADSCs都具有较强的增殖能力，可扩增为大量细胞，用于实验研究。
2.BADSCs和WADSCs均具有成脂分化能力，但WADSCs成脂分化能力较强；BADSCs和WADSCs均具有成骨分化能力，但BADSCs成骨分化能力较强；BADSCs和WADSCs均具有成软骨分化能力，且二者成软骨分化能力无明显差异。
3.MiR-99a和miR-127-5p在ADSCs的软骨分化中均可起到一定的调节作用，miR-99a在ADSCs的软骨分化中可起到抑制即负调节作用，miR-127-5p在ADSCs的软骨分化中可起到促进即正调节作用。MiR-99a-inhibitor可削弱miR-99a的负调节作用与正调节因子miR-127-5p协同促进ADSCs的软骨分化。