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目的：体外培养和诱导供体大鼠骨髓来源的未成熟树突状细胞（immature dendritic cell，imDC），使用趋化因子受体7(chemokine receptor7，CCR7)基因重组腺病毒体外转染imDC，研究其对大鼠同种异体高危角膜移植免疫排斥反应的影响，探讨其诱导免疫耐受的机制。方法：通过联合应用重组大鼠粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子（Granulocyte-macrophage colonystimulating factor，GM-CSF）和白细胞介素（Interleukin，IL）-4体外培养、诱导、扩增大量的imDC，通过细胞形态及表型对其加以鉴定；将携带大鼠CCR7基因的重组腺病毒通过增强离心法转染imDC，对转染后的imDC再次进行形态及表型鉴定，并通过细胞免疫荧光检测CCR7的表达；以60只SD大鼠作为受体，30只Wistar大鼠作为供体，通过碱烧伤建立高危角膜移植模型；采用随机数字表法将受体SD大鼠分为空白对照组、未修饰imDC组（imDC组）、 imDC+空载体腺病毒组(imDC+Ad组)和imDC+CCR7腺病毒组(imDC+Ad-CCR7组)，每组各15只；各组受体术前7d和术后3d分别经尾静脉注入PBS液、供体来源的未修饰imDC、空载体腺病毒转染后的imDC和携带CCR7基因的腺病毒转染后的imDC(1×107个/只，细胞悬浮于0.1ml PBS液中，空白对照组只注入等量PBS液)；术后每日在裂隙灯下观察角膜植片的存活情况并评分，术后14d每组随机处死6只受体大鼠，取角膜植片行HE切片观察以及通过RT-PCR检测Th1型细胞因子IL-2、干扰素-（γinterferonγ，IFN-γ）和Th2型细胞因子IL-4、IL-10的mRNA表达水平。结果：培养的imDC经过倒置相差显微镜及扫描电镜的形态学观察、流式细胞仪进行的免疫学表型检测，可证实为实验所需的imDC；细胞免疫荧光显示imDC不表达CCR7，imDC经空载体腺病毒转染后不表达CCR7,经CCR7腺病毒转染后CCR7表达增加；角膜移植术后，imDC+Ad-CCR7组大鼠角膜植片的混浊、水肿及新生血管程度评分较其他组均明显降低，差异有统计学意义(P<0.05)；角膜植片平均存活时间（MST）：imDC+Ad-CCR7组较对照组、imDC组和imDC+Ad组显著延长，差异有统计学意义(P<0.05)；角膜HE切片显示，imDC+Ad-CCR7组植片轻度水肿、基质层板层纤维排列有序，imDC组和imDC+Ad组呈不同程度水肿，基质层板层纤维排列轻度紊乱、有少量的炎性细胞；空白对照组的植片高度水肿、角膜基质板层纤维紊乱，出现大量炎性细胞和新生血管；RT-PCR显示：imDC+Ad-CCR7组Th1型细胞因子IFN-γ、IL-2mRNA的表达较对照组、imDC组和imDC+Ad组明显降低；Th2型细胞因子IL-4、IL-10mRNA的表达明显升高，差异有统计学意义（均为P<0.05）。结论：通过腺病毒增强离心法转染imDC可使CCR7基因有效转入imDC并表达CCR7蛋白；通过静脉输注供体骨髓来源的经CCR7基因修饰的imDC可以有效抑制高危角膜移植免疫排斥反应，诱导免疫耐受，延长植片的存活时间；经CCR7基因修饰的imDC可能主要通过诱导Th1/Th2偏移参与诱导高危角膜移植免疫耐受。